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Ursachen der Tuberkulose
Zuletzt überprüft: 04.07.2025

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Die Familie Mycobacteriaceae der Ordnung Actinomycetales umfasst die Gattung Mycobacterium. 1975 umfasste diese Gattung etwa 30 Arten, im Jahr 2000 waren es bereits fast 100. Die meisten Mykobakterienarten zählen zu den saprophytischen Mikroorganismen und sind in der Umwelt weit verbreitet.
Die Gruppe der obligaten Parasiten ist unbedeutend, aber ihre praktische Bedeutung ist groß und wird durch die Arten bestimmt, die Tuberkulose bei Mensch und Tier verursachen. Es besteht die Meinung, dass die Vorgänger der für den Menschen pathogenen Mykobakterien alte Bodenmykobakterien waren.
Taxonomie von Mykobakterien
Alle Mykobakterien werden in für den Menschen pathogene und opportunistische unterteilt.
In der klinischen Mikrobiologie werden verschiedene Ansätze zur Klassifizierung von Mykobakterien verwendet:
- durch die Geschwindigkeit und optimale Temperatur des Wachstums, die Fähigkeit zur Pigmentbildung;
- für klinisch bedeutsame Komplexe.
Die Mykobakterienarten, die Tuberkulose verursachen, werden zum M. tuberculosis-Komplex zusammengefasst. Dieser umfasst M. tuberculosis, M. bovis, M. bovis BCG, M. africanum, M. microti und M. canettii. Kürzlich wurden auch M. pinnipedii und M. sarrae hinzugefügt, die phylogenetisch mit M. microti und M. bovis verwandt sind.
Die übrigen Mykobakterien, die verschiedene Mykobakteriosen verursachen, werden als nichttuberkulöse Mykobakterien klassifiziert. Von dieser Gruppe werden folgende Komplexe unterschieden: M. avium, bestehend aus M. avium, M. intracellulare, M. scrofulaceum; M. fortuitum einschließlich der Unterarten M. fortuitum und M. chelonae sowie M. terrae, einschließlich M. terrae, M. triviale und M. nonchromogenicum. Die wichtigsten Gruppen sind der Lepra-Erreger M. leprae sowie der Erreger ulzerativer Läsionen, Buruli, M. ulcerans.
Diese Klassifikation vereint Mykobakterienarten mit gleicher klinischer Bedeutung, sofern deren feinere Differenzierung nicht wesentlich ist. Zur Identifizierung der Arten innerhalb von Gruppen und Komplexen werden biologische, biochemische und molekulare Methoden eingesetzt.
Die Klassifizierung nichttuberkulöser Mykobakterien basierend auf kulturellen Unterschieden wurde 1959 von Runyon entwickelt. Demnach werden 4 Gruppen von Mykobakterien unterschieden.
Gruppe I – photochromogene Mykobakterien
Diese Gruppe umfasst Mykobakterien, die im Dunkeln nicht pigmentiert sind, aber bei Lichteinwirkung eine leuchtend gelbe oder gelb-orange Pigmentierung annehmen. Potenziell pathogene Stämme dieser Gruppe sind M. asiaticum, M. kansasii, M. marinum und M. simiae. Zu den Mykobakterien dieser Gruppe gehören sowohl schnell wachsende (M. marinum) als auch langsam wachsende (M. asiaticum, M. kansasii). Die optimale Wachstumstemperatur variiert zwischen 25 ° C für M. simiae, 32–33 ° C für M. marinum und 37 ° C für M. asiaticum.
Die klinisch bedeutendste Art in unserem Land ist M. kansasii, die in Gewässern vorkommt. Der M. kansasii-Stamm (M. luciflavum) verursacht Krankheiten beim Menschen. Er wächst in einem Eimedium als raue oder glatte Kolonien mit einem Temperaturoptimum von 37 ° C. Morphologisch sind die Bakterien mittellang. Bisher wurden zwei Varianten von M. kansasii beschrieben: orange und weiß. Bei Meerschweinchen verursacht M. kansasii Infiltrate und Verdichtung der regionalen Lymphknoten.
Gruppe II – scotochromogene Mykobakterien (vom griechischen Wort scotos – Dunkelheit)
Zu dieser Gruppe gehören Mykobakterien, die im Dunkeln Pigmente bilden. Die Wachstumsrate beträgt 30–60 Tage. Zu dieser Gruppe gehören M. aquae (M. gordonae) und M. scrofulaceum.
M. scrofulaceum gilt als potenziell pathogene Art. Auf Ei-Nährboden wachsen Bakterien dieser Art als glatte oder raue Kolonien von oranger Farbe. Morphologisch sind Mykobakterien stäbchenförmig, kurz oder lang. Sie wachsen bei Temperaturen zwischen 25 und 37 ° C. Bei Kindern verursachen sie Schäden an Lymphknoten und Lunge.
M. aquae (M. gordonae) gehören zu den saprophytischen skotochromogenen Mykobakterien. Sie wachsen in Eimedium als orangefarbene Kolonien bei einer Temperatur von 25–37 °C. Morphologisch sind die Mykobakterien stäbchenförmig und mäßig lang (> 5 μm). Sie kommen in Gewässern vor.
Gruppe III – nicht-photochromogene Mykobakterien
Zu dieser Gruppe gehören Mykobakterien, die kein Pigment bilden oder eine blassgelbe Farbe aufweisen, die sich im Licht nicht intensiviert. Sie wachsen 2–3 oder 5–6 Wochen. Zu ihnen gehören: M. avium, M. intracellulare, M. xenopi, M. terrae, M. gastri, M. hattey und M. bruiiense.
M. avium (Vogelmykobakterien) wachsen auf dem Löwenstein-Jensen-Medium als pigmentierte oder schwach pigmentierte Kolonien bei 37 ° C und 45 ° C. Morphologisch handelt es sich um mittellange Stäbchen. Sie können für Menschen und eine Reihe von Labor- und Haustieren (z. B. Schweinen) pathogen sein. Sie kommen in Wasser und Boden vor.
M. xenopi wird aus einer Kröte isoliert. Junge Kulturen wachsen als unpigmentierte Kolonien. Später erscheint ein gelbes Pigment. Morphologisch handelt es sich um lange, fadenförmige Stäbchen. Sie wachsen bei einer Temperatur von 40–45 ° C. Sie sind für den Menschen bedingt pathogen.
M. terrae wurde erstmals aus Rettich isoliert. Sie wachsen auf Löwenstein-Jensen-Medium und bilden pigmentfreie Kolonien. Die optimale Wachstumstemperatur liegt bei 37 ° C. Morphologisch handelt es sich um mittellange Stäbchen, Saprophyten.
Gruppe IV – schnell wachsende Mykobakterien
Mykobakterien dieser Gruppe zeichnen sich durch schnelles Wachstum (bis zu 7–10 Tage) aus. Sie wachsen in Form pigmentierter oder nicht pigmentierter Kolonien, häufiger in Form der R-Form. Gutes Wachstum ist für 2–5 Tage bei einer Temperatur von 25 ° C gegeben. Zu dieser Gruppe gehören potenziell pathogene Mykobakterien M. fortuitum sowie saprophytische Mykobakterien wie M. phlei, M. smegmatis usw. M. fortuitum zeigt am 2.–4. Tag sichtbares Wachstum auf dem Eimedium in Form einer „Rosette“. Morphologisch werden Mykobakterien durch kurze Stäbchen dargestellt. Auf dem Löwenstein-Jensen-Medium können sie Malachitgrün absorbieren und sich grün verfärben. Sie sind in der Natur weit verbreitet.
Die Runyon-Klassifikation hat sich als sehr praktisch erwiesen, um die häufigsten Mykobakterientypen zu identifizieren. Die Entdeckung neuer Arten und das Auftreten einer zunehmenden Anzahl von Zwischenformen von Mykobakterien erschwert jedoch deren Zuordnung zu der einen oder anderen Runyon-Gruppe.
M. tuberculosis ist eine junge evolutionäre Formation. In letzter Zeit gibt es eine Tendenz, M. tuberculosis in Gruppen oder Familien zu unterteilen. Die wichtigsten Stämme sind die der Beijing-Familie, die sich durch klonales Verhalten und die Fähigkeit, Mikroausbrüche von Tuberkulose zu verursachen, auszeichnen.
Morphologie von Mykobakterien
Mykobakterien sind dünne, stäbchenförmige Zellen mit der charakteristischen Eigenschaft der Säure- und Alkoholbeständigkeit (in einem der Wachstumsstadien) und aerob. Bei einer Gram-Färbung sind sie schwach grampositiv. Mykobakterien sind unbeweglich und bilden keine Sporen. Konidien oder Kapseln fehlen. Auf dichten Nährmedien wachsen sie langsam bis sehr langsam: Bei optimaler Temperatur erscheinen sichtbare Kolonien nach 2–60 Tagen. Kolonien sind rosa, orange oder gelb, insbesondere im Licht. Das Pigment diffundiert nicht. Die Oberfläche der Kolonien ist meist matt (S-Typ) oder rau (R-Typ). Mykobakterien wachsen oft in Form von schleimigen oder faltigen Kolonien. Auf flüssigen Medien wachsen Mykobakterien auf der Oberfläche. Der zarte, trockene Film verdickt sich mit der Zeit, wird holprig-faltig und nimmt einen gelblichen Farbton an. Die Brühe bleibt transparent und in Gegenwart von Detergenzien kann diffuses Wachstum erreicht werden. In den Mikrokolonien von M. tuberculosis (also im Frühstadium) bilden sich strangähnliche Strukturen – ein Merkmal, das mit dem Cord-Faktor in Zusammenhang steht.
Bei der Färbung mit Karbolfuchsin erscheinen Mycobacteria tuberculosis als dünne, leicht gebogene Stäbchen von himbeerroter Farbe, die eine unterschiedliche Anzahl von Körnchen enthalten.
Mykobakterien sind etwa 1–10 µm lang und 0,2–0,7 µm breit. Gelegentlich finden sich gekrümmte oder verdrehte Varianten. Einzeln, paarweise oder in Gruppen angeordnete Mikroorganismen heben sich gut vom blauen Hintergrund anderer Präparatbestandteile ab. Bakterienzellen sind oft in Form eines römischen „V“ angeordnet.
Das Präparat kann auch veränderte, kokkensäureresistente Formen des Erregers, abgerundete, kugelförmige oder myzelartige Strukturen aufweisen. In diesem Fall muss eine positive Antwort durch zusätzliche Methoden bestätigt werden.
Der Aufbau der Zellwand von Mykobakterien
Die Zellwand von Mykobakterien ist im Vergleich zu anderen Prokaryoten am komplexesten.
Während gramnegative Bakterien zwei Membranen besitzen, besteht die Zellwand mykobakterieller Zellen aus mehreren Schichten, die teilweise Zucker enthalten und sich durch eine relativ konstante Zusammensetzung auszeichnen. Die äußeren Schichten haben eine wechselnde chemische Zusammensetzung und bestehen hauptsächlich aus Lipiden, meist Mykolsäuren und deren Derivaten. Diese Schichten sind in der Regel unter dem Elektronenmikroskop nicht sichtbar. Das primäre Gerüst der Zellwand bilden vernetzte Peptidglykane – eine elektronendichte Schicht. Die Arabinogalactanschicht wiederholt die Peptidglykanschicht und bildet ein Polysaccharidstroma der Zellwand. Sie verfügt über Verbindungspunkte mit der Peptidglykanschicht und Strukturen zur Anheftung von Mykolsäuren und deren Derivaten.
Mykolsäuren liegen in Form von freien Sulfolipiden und Cord-Faktor vor, deren Vorhandensein auf der Zelloberfläche mit der charakteristischen Bildung von M. tuberculosis-Kolonien in Form von Flagellen verbunden ist. Die Einzigartigkeit und Schlüsselrolle von Mykolsäuren in der strukturellen Organisation und Physiologie von Mykobakterien machen sie zu einem hervorragenden Ziel für die etiotrope Therapie.
Die Glykolipidschicht wird als „Mykoside“ bezeichnet und manchmal mit einer Mikrokapsel verglichen. Mykoside ähneln strukturell und funktionell den Lipopolysacchariden der äußeren Membran gramnegativer Bakterien, sind jedoch nicht deren Aggressivität; dennoch sind sie toxisch und verursachen (wie Cordfaktor und Sulfolipide) die Bildung von Granulomen.
Die Zellmembran und die Schichten der Zellwand sind mit Kanälen oder Poren durchzogen, wobei man zwischen passiven Poren mit kurzer Lebensdauer, die eine kontrollierte Diffusion von Stoffen ermöglichen, und Kanälen mit längerer Lebensdauer, die einen energieabhängigen Transport von Stoffen ermöglichen, unterscheidet.
Ein weiterer Bestandteil der mykobakteriellen Zellwand ist Lipoarabinomannan. Es ist an der Plasmamembran verankert, durchdringt die Zellwand und tritt an deren Oberfläche aus. In dieser Hinsicht ähnelt es den Lipoteichonsäuren grampositiver Bakterien oder dem Lipopolysaccharid-O-Antigen gramnegativer Bakterien. Die terminalen Fragmente des Lipoarabinomannans, vor allem seine Mannoseradikale, unterdrücken unspezifisch die Aktivierung von T-Lymphozyten und Leukozyten im peripheren Blut. Dies führt zu einer Störung der Immunantwort gegen Mykobakterien.
Variabilität und Existenzformen von Mykobakterien
Die Persistenz von Bakterien hat eine besondere pathogenetische Bedeutung. Laborexperimente in vitro und in vivo haben gezeigt, dass die bakteriziden Medikamente Isoniazid und Pyrazinamid Mykobakterien nur in der Reproduktionsphase abtöten. Befinden sich Mykobakterien in der Phase geringer Stoffwechselaktivität (d. h. das Bakterienwachstum ist fast vollständig eingestellt und die Bakterien können als „ruhend“ bezeichnet werden), wirken bakterizide Medikamente nicht auf sie. Dieser Zustand wird üblicherweise als ruhend bezeichnet, und die Mikroorganismen werden als Persister bezeichnet. Persister reagieren nicht empfindlich auf Chemotherapeutika, d. h. sie verhalten sich wie resistente Mikroorganismen. Tatsächlich können sie ihre Empfindlichkeit gegenüber Medikamenten beibehalten.
Ein starker Stimulus für den Übergang mykobakterieller Zellen in einen Ruhezustand sind Chemotherapeutika sowie Faktoren des Immunsystems des Wirtes. Persistente Mykobakterien können monatelang oder sogar jahrelang in den Läsionen verbleiben. Während der Persistenz können sich Mykobakterien in L-Formen umwandeln. In dieser Form weisen Mykobakterien eine extrem geringe Stoffwechselaktivität auf, die in erster Linie auf die Vergrößerung der Zellwand und der extrazellulären Matrix abzielt, was eine einfache Diffusion von Substanzen verhindert. Darüber hinaus akkumulieren Mykobakterien genetisches Material, was die Wahrscheinlichkeit erhöht, dass unter günstigen Bedingungen eine normal funktionierende Zelle wiederhergestellt wird. Der Nachweis von L-Formen mit mikrobiologischen Standardmethoden ist schwierig.
Wenn ruhende Mykobakterien während der Chemotherapie ihre Stoffwechselaktivität wiedererlangen und sich zu vermehren beginnen, sterben sie rasch ab. Nach Abschluss der Chemotherapie vermehren sich diese „wiederbelebten“ Mykobakterien weiter und verursachen einen Rückfall der Krankheit. Dies erklärt die Rechtfertigung für lange Chemotherapiezyklen und den Einsatz anschließender kurzer, meist saisonaler prophylaktischer Chemoprophylaxezyklen.
Physiologie von Mykobakterien
Im Reich der Prokaryoten sind Mykobakterien die unangefochtenen Spitzenreiter auf dem Gebiet der Synthese komplexer organischer Verbindungen. Sie verfügen wahrscheinlich über den flexibelsten Stoffwechsel und bieten die notwendige Variabilität zum Überleben sowohl in der äußeren Umgebung als auch im Makroorganismus. Bislang wurden über 100 enzymatische Reaktionen beschrieben, die die Verzweigung und Komplexität des mykobakteriellen Stoffwechsels verdeutlichen. Zur Synthese von Endverbindungen oder zur Bereitstellung der notwendigen physiologischen Funktionen in Mykobakterien können parallele Stoffwechselwege durchlaufen werden, abhängig von der Verfügbarkeit des Substrats, der chemischen Umgebung und der Versorgung der Atmungszyklen mit den notwendigen Komponenten (Metallionen, Sauerstoffpartialdruck, Kohlendioxid usw.).
Biochemische Eigenschaften von Mykobakterien
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Fettstoffwechsel
Zellwandlipide, die bis zu 60 % der Trockenmasse der Zelle ausmachen, bestimmen die außergewöhnlichen farblichen, physiologischen und ökologischen Eigenschaften von Mykobakterien.
Die bisher beschriebenen spezifischen Lipide von Mykobakterien werden nach strukturellen Merkmalen in 7 Hauptgruppen unterteilt:
- Fettsäurederivate von Kohlenhydraten (hauptsächlich Trehalose - Cordfaktor):
- Phosphatidylmyoinositolmannoside:
- Fettsäurederivate von Peptiden;
- N-Acylpeptidglykoside – Mykoside C;
- Fettsäureester von Phthiocerolen;
- Mykoside A, B, G;
- Glycerinmycolate.
Lipide der Gruppen 4–6 kommen nur in Mykobakterien vor.
Zu den einzigartigen Substanzen zählen Tuberculostearin- und Tuberculopalmitinsäure, die Vorläufer der Mykolsäure sind.
Mykolsäuren sind eine Gruppe hochmolekularer Fettsäuren mit einer Kettenlänge von bis zu 84 Kohlenstoffatomen, deren Struktur der Hauptkette durch die systematische Position des Mikroorganismus und seine Wachstumsbedingungen bestimmt wird. Ihre geringe Reaktivität gewährleistet eine hohe chemische Beständigkeit der Zellwand von Mykobakterien. Mycolate unterdrücken die enzymatische Spaltung der Zellwand und Radikalreaktionen.
Cord-Faktor wird als Lipidgruppe 1 klassifiziert. Er wird mit hoher Toxizität gegenüber Mykobakterien und Virulenz in Verbindung gebracht.
Oberflächenaktive Lipide, sogenannte Sulfolipide, spielen eine wichtige Rolle bei der intrazellulären Anpassung von Mykobakterien. Zusammen mit dem Cord-Faktor bilden sie zytotoxische membranotrope Komplexe.
Lipoarabinomannan ist eine heterogene Mischung hochmolekularer Lipopolysaccharide: verzweigte Polymere aus Arabinose und Mannose mit Diacylglycerol-Derivaten der Palmitin- und Tuberculostearinsäure.
Mykoside C sind Peptidglykolipide, die die äußere Membran von Mykobakterien bilden und unter dem Elektronenmikroskop als transparente Zone an der Zellperipherie sichtbar sind. Mykoside sind artspezifische Verbindungen. Die antigenen Eigenschaften von Mykobakterien hängen von ihrem Typ ab.
Die quantitative und qualitative Zusammensetzung der Lipidverbindungen von Mykobakterien ist dynamisch und hängt vom Alter der Zellen, der Zusammensetzung des Nährmediums und den physikochemischen Eigenschaften der Umgebung ab. Junge Mykobakterienzellen beginnen mit der Bildung einer Zellwand durch die Synthese von Lipopolysacchariden mit relativ kurzen aliphatischen Ketten. In diesem Stadium sind sie für das Immunsystem sehr anfällig und zugänglich. Mit dem Wachstum der Zellwand und der Bildung hochmolekularer Lipide entwickeln Mykobakterien Resistenz und Indifferenz gegenüber dem Immunsystem.
Kohlenhydratstoffwechsel
Die bevorzugte Kohlenstoffquelle für Mykobakterien ist Glycerin.
Die wichtigsten Kohlenhydrate sind Arabinose, Mannose und Maltose, die mehr als die Hälfte aller Saccharide ausmachen. Darüber hinaus spielen Trehalose, Glucose, Fructose, Galactose, Rhamnose und einige andere Saccharide eine wichtige Rolle im Zellleben. Die Synthese erfolgt über Hydrolase- und Aldolasewege. Der Pyruvatweg dient der Glykogensynthese. Arabinose und Mannose sind an der Bildung wichtiger Strukturverbindungen beteiligt. Der Pentosephosphatweg der Glucoseoxidation dient der Energiegewinnung. Er wird durch die Enzyme Malat-, Isocitrat- und Succinatdehydrogenasen bereitgestellt, die dem Atmungssystem Flexibilität verleihen.
Der Glyoxylatweg, den Mykobakterien nutzen, um während des mykobakteriellen Wachstums angesammelte freie Fettsäuren in den Tricarbonsäurezyklus einzubauen, ist einzigartig. Dieser Zyklus hat die Aufmerksamkeit der Forscher als möglicher Mechanismus für die Chemotaxis mykobakterieller Persistenz auf sich gezogen.
Stickstoff- und Aminosäurestoffwechsel
Die Verwertungsrate von Nitraten, Nitriten und Hydroxylaminen durch Mykobakterien kann zur Artenidentifizierung herangezogen werden. Mykobakterien bevorzugen Asparagin als Stickstoffquelle. Die Synthese von Aminosäuren ist ein energieabhängiger Prozess und wird durch eine Gruppe von Enzymen ermöglicht, die die Verwertung anderer Aminosäureverbindungen wie Glutamat ermöglichen.
Nitrit- und Nitratreduktaseaktivität
Mycobacterium tuberculosis kann Adenosintriphosphat (ATP) bilden, indem es Elektronen entlang einer Kette von Trägern überträgt, die mit NO 3 – statt mit O 2 – endet. Diese Reaktionen reduzieren NO 3 zu NH 3 in Mengen, die für die Synthese von Aminosäuren, Purin- und Pyrimidinbasen notwendig sind. Dies wird durch die sequentielle Wirkung von Nitrat- und Nitritreduktasen erreicht.
Katalase- und Peroxidaseaktivität
Katalase verhindert die Ansammlung von Wasserstoffperoxid, das bei der aeroben Oxidation reduzierter Flavoproteine entsteht. Die Enzymaktivität hängt vom pH-Wert des Mediums und der Temperatur ab. Bei einer Temperatur von 56 °C ist Katalase nicht aktiv. Es gibt Tests zur Zugehörigkeit zum pathogenen Komplex der Mykobakterien, die auf der Thermolabilität der Katalase basieren.
Es ist bekannt, dass 70 % der gegen Isoniazid resistenten Mycobacterium tuberculosis-Stämme ihre Katalase- und Peroxidaseaktivität verlieren.
Die Peroxidase- und Katalaseaktivität wird vom selben Enzymkomplex ausgeführt.
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Vitamine und Coenzyme
M. tuberculosis enthält B-Vitamine (Riboflavin, Pyridoxin, Cyanocobalamin, Thiamin), Vitamin C und K, Para-Aminobenzoesäure, Pantothensäure und Nikotinsäure, Biotin und Folsäure.
Stoffwechsel, Ernährung und Atmung von Mykobakterien
Unter normalen, günstigen Bedingungen sind Mycobacteria tuberculosis strikte Aerobier und Mesophile, d. h. sie wachsen in Gegenwart von Sauerstoff und im Temperaturbereich von 30–42 ° C, am besten bei 37 ° C. Unter ungünstigen äußeren Bedingungen und/oder Sauerstoffmangel manifestieren sich Mycobacteria tuberculosis als Mikroaerophile und sogar als Anaerobier. In diesem Fall erfährt ihr Stoffwechsel erhebliche Veränderungen.
Mykobakterien ähneln hinsichtlich Sauerstoffverbrauch und Entwicklung von Oxidasesystemen den echten Pilzen. Vitamin K9 dient als Bindeglied zwischen NADH-Dehydrogenase und Cytochrom b im Transfersystem der Gattung Mycobacterium. Dieses Cytochromsystem ähnelt dem mitochondrialen. Es reagiert, wie höhere Organismen, empfindlich auf Dinitrophenol.
Die beschriebene Atmungsart ist nicht die einzige Quelle der ATP-Bildung. Neben dem O 2 -Terminus können Mykobakterien Atmungsketten nutzen, die Elektronen übertragen und mit Nitraten (NO 3- ) enden. Die Reserve des Atmungssystems von Mykobakterien ist der Glyoxylatzyklus.
Die anoxische (endogene) Atmung, die in einer Atmosphäre mit einer Sauerstoffkonzentration von weniger als 1 % stattfindet, wird durch Azidverbindungen stimuliert, die die Oxidation von Pyruvat oder Trehalose reduzieren.
Wachstum und Vermehrung von Mykobakterien
Mycobacterium tuberculosis vermehrt sich extrem langsam: Die Verdopplungsperiode beträgt 18–24 Stunden (normale Bakterien teilen sich alle 15 Minuten). Daher sind mindestens 4–6 Wochen erforderlich, um ein sichtbares Wachstum typischer Kolonien zu erzielen. Als einer der Gründe für die langsame Vermehrung von Mykobakterien gilt ihre ausgeprägte Hydrophobie, die die Diffusion von Nährstoffen erschwert. Es ist wahrscheinlicher, dass dies genetisch bedingt ist und mit der komplexeren Struktur der Mykobakterien zusammenhängt. So ist beispielsweise bekannt, dass die meisten Bakterien mehrere Kopien des ribosomalen Ribonukleinsäure-Operons (rRNA) besitzen. Langsam wachsende Mykobakterien (M. tuberculosis, M. leprae) besitzen eine Kopie des Operons, schnell wachsende (M. smegmatis) hingegen nur zwei Kopien.
Bei Kultivierung in flüssigen Medien wachsen Mykobakterien auf der Oberfläche. Der zarte, trockene Film verdickt sich mit der Zeit, wird holprig und faltig und nimmt einen gelblichen Farbton an, der oft mit der Farbe von Elfenbein verglichen wird. Die Brühe bleibt transparent, und diffuses Wachstum kann nur in Gegenwart von Detergenzien wie Tween-80 erreicht werden. In Mikrokolonien (d. h. im Frühstadium) bilden sich bündelähnliche Strukturen – ein Merkmal, das mit dem Cord-Faktor von M. tuberculosis assoziiert ist.
Genetik von Mykobakterien
Die Gattung Mycobacterium ist genetisch sehr vielfältig. Im Gegensatz zu vielen saprophytischen und nichttuberkulösen Mykobakterien enthält Mycobacterium tuberculosis keine extrachromosomalen Einschlüsse (z. B. Plasmide). Die gesamte Vielfalt der Eigenschaften von Mycobacterium tuberculosis wird durch sein Chromosom bestimmt.
Das Genom des M. tuberculosis-Komplexes ist äußerst konservativ. Seine Vertreter weisen eine DNA-Homologie von 85–100 % auf, während die DNA anderer Mykobakterienarten nur zu 4–26 % mit M. tuberculosis homolog ist.
Vertreter der Gattung Mycobacteria haben im Vergleich zu anderen Prokaryoten große Genome – 3,1–4,5 x 10 9 Da. Die Genome pathogener Arten sind jedoch kleiner als die anderer Mykobakterien (bei M. tuberculosis – 2,5 x 10 9 Da). Der klassische Erreger der menschlichen Tuberkulose, M. tuberculosis, besitzt mehr Gene als M. africanum und M. bovis, die im Laufe der Evolution einen Teil ihres genetischen Materials verloren haben.
1998 wurde die Nukleotidsequenz des Chromosoms des H37Rv-Stamms von M. tuberculosis veröffentlicht. Seine Länge beträgt 4.411.529 Basenpaare. Das Chromosom des Tuberkulose-Mykobakteriums hat eine Ringstruktur. Es enthält etwa 4.000 Gene, die Proteine kodieren, sowie 60 Gene, die funktionelle RNA-Komponenten kodieren: ein einzigartiges ribosomales RNA-Operon, 10Sa-RNA. beteiligt sich am Abbau von Proteinen mit atypischer Matrix-RNA. 45 Transport-RNA (tRNA), mehr als 90 Lipoproteine.
Mehr als 20 % des Genoms sind von Genen des Zellwand-Fettsäurestoffwechsels besetzt, darunter Mykolsäuren und glycinreiche saure Polypeptide (PE- und PPE-Familien), die durch polymorphe Regionen des PGRS- (Polymorphic GC-rich repetitive sequence) bzw. MPTR-Genoms (Major polymorphic tandem repeat) kodiert werden (der fünfte und vierte Ring der genomischen Chromosomenkarte). Die Variabilität dieser Genomregionen gewährleistet Unterschiede in Antigenen und die Fähigkeit, die Immunantwort zu hemmen. Das Genom von Mycobacterium tuberculosis enthält zahlreiche Gene, die Virulenzfaktoren kontrollieren.
Mycobacterium tuberculosis synthetisiert alle für den Stoffwechsel notwendigen Komponenten: essentielle Aminosäuren, Vitamine, Enzyme und Kofaktoren. Im Vergleich zu anderen Bakterienarten weist M. tuberculosis eine erhöhte Aktivität der Lipogenese-Enzyme auf. Zwei Gene kodieren hämoglobinähnliche Proteine, die als antioxidative Schutzmechanismen oder als Abfangmechanismen für überschüssigen zellulären Sauerstoff fungieren. Diese Eigenschaften ermöglichen Mycobacterium tuberculosis eine schnelle Anpassung an abrupte Veränderungen der Umweltbedingungen.
Eine Besonderheit des komplexen Genoms von M. tuberculosis ist die große Anzahl sich wiederholender DNA-Sequenzen. So enthält das Chromosom von M. tuberculosis H37Rv bis zu 56 Kopien von IS-Elementen (Insertionssequenzen), die den DNA-Polymorphismus von Mycobacterium tuberculosis ermöglichen. Die meisten davon, mit Ausnahme des Elements IS6110, sind unverändert. Die Chromosomen verschiedener Stämme von Mycobacterium tuberculosis enthalten üblicherweise 5 bis 20 Kopien von IS6110, es gibt jedoch Stämme, denen dieses Element fehlt. Neben IS-Elementen enthält das Genom verschiedene Arten von kurzen Nukleotidwiederholungen (PGRS und MPTR) sowie direkte Wiederholungen DR (Direct Repeat), die sich in der DR-Region befinden und durch variable Sequenzen – Spacer (der sechste Ring auf der Chromosomenkarte) – getrennt sind. Unterschiede in der Kopienzahl und der Lokalisation dieser genetischen Elemente auf dem Chromosom werden in der molekularen Epidemiologie zur Differenzierung von Mycobacterium tuberculosis-Stämmen genutzt. Die fortschrittlichsten Schemata zur Genotypisierung von Mykobakterien basieren auf dem Nachweis genomischer Polymorphismen, die durch das IS6110-Element sowie DR und deren Spacer verursacht werden. Charakteristisch ist, dass die Divergenz der M. tuberculosis-Spezies in der Regel durch Rekombinationen zwischen Kopien des IS6110-Elements entsteht, die unterschiedliche Gene flankieren.
Zwei Prophagen, phiRv1 und phiRv2, wurden im H37Rv-Genom gefunden. Wie die Dral-polymorphe Stelle sind sie wahrscheinlich mit Pathogenitätsfaktoren assoziiert, da sich diese Genomregionen von ähnlichen Regionen der avirulenten Stämme von M. tuberculosis H37Ra und M. bom BCG unterscheiden. Genomregionen (mutT-, ogt-Gene), die für eine erhöhte Mutationsrate und Anpassung von Mycobacteria tuberculosis unter Druckbedingungen verantwortlich sind, wurden identifiziert. Die Entdeckung von Triggergenen für die Dormanz von Mycobacteria tuberculosis veränderte das Konzept der latenten Tuberkuloseinfektion.
Untersuchung des Polymorphismus von Genen, die für Katalase, Peroxidase und die A-Untereinheit der DNA-Gyrase kodieren. Im M. tuberculosis-Komplex wurden drei genotypische Gruppen identifiziert. Die älteste (aus evolutionärer Sicht) ist Gruppe I: M. africanum, M. bovis, M. tuberculosis und M. microti. Die Gruppen II und III umfassen verschiedene Stämme von M. tuberculosis, die in einigen geografischen Regionen weit verbreitet sind. Klonales Verhalten ist charakteristisch für die Gruppen I und II, und Stämme der Gruppe III verursachen äußerst selten Massenerkrankungen. Genetische Familien von M. tuberculosis, die die Namen Haarlem, Afrika und Philippinen erhielten, sind in verschiedenen Regionen der Welt weit verbreitet.
Eine besondere Stellung nimmt die Familie Beijing ein, die erstmals zwischen 1956 und 1990 in histologischen Präparaten von Lungengewebe von Patienten in den Vororten Pekings identifiziert wurde. Bislang wurden Stämme dieser Familie in asiatischen Ländern, Südafrika, der Karibik und den USA gefunden. Die Verbreitung dieses Genotyps in verschiedenen Gebieten wird durch die ethnischen Merkmale der einheimischen Bevölkerung und der Migranten bestimmt. Kürzlich wurden Daten zur Verbreitung von Stämmen des SI/Beijing-Genotyps im Nordwesten des europäischen Teils Russlands (St. Petersburg) und in den Regionen Sibiriens erhoben.
Mykobakterielle Resistenz
Im Laufe der Evolution haben Tuberkulose-Mykobakterien verschiedene Mechanismen entwickelt, um ungünstige Umweltfaktoren zu überwinden oder zu inaktivieren. Erstens handelt es sich um eine starke Zellwand. Zweitens handelt es sich um umfassende Stoffwechselfähigkeiten. Sie sind in der Lage, viele zelluläre Toxine und Substanzen (verschiedene Peroxide, Aldehyde und andere), die die Zellmembran zerstören, zu inaktivieren. Drittens handelt es sich um morphologische Plastizität, die in der Transformation von Mykobakterien (der Bildung von L-Formen ruhender Zellen) besteht. In Bezug auf ihre Stabilität nehmen sie nach den sporenbildenden Bakterien einen führenden Platz im Reich der Prokaryoten ein.
Der Erreger bleibt in trockenem Zustand bis zu drei Jahre lebensfähig. Beim Erhitzen können Tuberkulose-Mykobakterien Temperaturen deutlich über 80 °C standhalten. Heute geht man davon aus, dass Tuberkulose-Mykobakterien im Sputum lebensfähig bleiben, wenn dieser fünf Minuten lang offen gekocht wird.
Mycobacterium tuberculosis ist resistent gegen organische und anorganische Säuren, Laugen, viele Oxidationsmittel sowie eine Reihe antiseptischer und dehydratisierender Substanzen, die sich nachteilig auf andere pathogene Mikroorganismen auswirken. Mycobacterium ist resistent gegen die Wirkung von Alkoholen und Aceton.
Es wird darauf hingewiesen, dass Produkte auf Basis von quartärem Ammonium keine antituberkulöse Wirkung aufweisen. Unter bestimmten Bedingungen haben auch Konzentrationen von Chlor- und Sauerstoffradikalen bis zu 0,5 % keine schädliche Wirkung auf Tuberkulose-Mykobakterien. Dies bedeutet, dass solche Produkte nicht zur Sterilisation von Sputum und anderen infizierten biologischen Materialien verwendet werden können.
Mycobacterium tuberculosis ist unempfindlich gegenüber diffusem Sonnenlicht und kann in der Umwelt länger als ein Jahr überleben, ohne seine Lebensfähigkeit zu verlieren. Kurzwellige ultraviolette Strahlung hat eine universelle bakterizide Wirkung auf alle Mikroorganismen. Unter realen Bedingungen erhöht sich jedoch die Resistenz von Mycobacterium tuberculosis gegenüber ultravioletter Strahlung, wenn es in Form von Zellagglomeraten mit Staubpartikeln suspendiert ist.
Die hohe Überlebensrate von Tuberkulose-Mykobakterien trägt dazu bei, dass sich diese Infektion unabhängig von den klimatischen Bedingungen extrem weit in der Bevölkerung verbreitet. Dies ist jedoch nicht der einzige Faktor, der zur Globalisierung des Problems beiträgt – Tuberkulose-Mykobakterien können lange Zeit im menschlichen Körper verbleiben und sich in unbegrenzten Abständen reaktivieren.
Die Lokalisierung des Tuberkulose-Mykobakteriums in Makrophagen gewährleistet eine ausreichende Substratstabilität unter Berücksichtigung der Langlebigkeit mononukleärer Phagozyten und der Dauer der mykobakteriellen Replikation sowie der Isolierung von humoralen Immunitätseffektoren. Gleichzeitig wählt der Erreger ein Biotop aus, das aufgrund seiner potenziellen Gefährlichkeit für die meisten Mikroorganismen inakzeptabel ist. Diese Symbiose wird durch eine Reihe von Anpassungsmechanismen der Mykobakterien ermöglicht.
Der Prozess der Makrophagenschädigung und des Parasitismus darin sieht folgendermaßen aus: Eindringen von Mykobakterien in den Makrophagen ohne dessen Aktivierung; Unterdrückung der Bildung von Phagolysosomen oder deren Umwandlung in eine für Bakterien angenehme Zone; Durchbruch von Phagosomen in das Zytoplasma mit Inaktivierung antimikrobieller Faktoren; Störung der lebenswichtigen Aktivität der Zelle; Schwächung der Empfindlichkeit von Makrophagen gegenüber aktivierenden Signalen von T-Lymphozyten; Verringerung der Antigen-präsentierenden Funktion von Makrophagen und die damit verbundene Schwächung der Reaktionen zytotoxischer T-Lymphozyten, die zur Zerstörung infizierter Zellen konfiguriert sind.
Natürlich spielen die Eigenschaften der Zellwand sowie die Stoffwechsel- und Funktionsfähigkeit eine wichtige Rolle dabei. Beim ersten Kontakt mit Mykobakterien ist das Immunsystem des Makroorganismus nicht in der Lage, die humorale Immunität zu aktivieren, die Zelle schnell zu neutralisieren und aus dem Körper zu eliminieren, da die beweglichen aliphatischen Ketten der Mykobakterienwand keine Beurteilung der Oberflächenstrukturen des Erregers ermöglichen und die relevanten Informationen für die Synthese der notwendigen Antikörper nicht übermitteln.
Die hohe Hydrophobie von Mykobakterien gewährleistet unspezifische, d. h. rezeptorunabhängige Kontakte mit Makrophagen. Indem der Makrophage ein Phagosom um die Mykobakterienzelle bildet, platziert er sie in sich. Oberflächenkomplexe aus Mykosid und Lipoarabinomannan können von Rezeptoren erkannt werden, aber die durch sie ausgelösten Signale aktivieren Makrophagen nicht oder nur schwach. Infolgedessen wird die Phagozytose nicht von der Freisetzung von Sauerstoff- und Stickstoffradikalen begleitet. Man geht davon aus, dass dies eher für virulente Stämme von M. tuberculosis charakteristisch ist, die aufgrund der strukturellen Merkmale von Lipoarabinomannan eine „nicht-aggressive“ Phagozytose initiieren. Andere Makrophagenrezeptoren, insbesondere CD14 und Rezeptoren der Komplementkomponente C3 (CR1-CR3), sind ebenfalls an der Erkennung von M. tuberculosis beteiligt.
Nachdem das Mykobakterium in das Innere des Makrophagen eingedrungen ist, setzt es eine Reihe von Mechanismen ein, die die Bildung des Phagolysosoms verhindern: die Produktion von Ammonium, das die Umgebung im Phagosom alkalisiert, und die Synthese von Sulfolipiden, die zur Bildung einer negativen Ladung auf der Oberfläche des Phagosoms führt, welche die Fusion von Phagosom und Lysosom verhindert.
Bei der Bildung eines Phagolysosoms ist das Mykobakterium dank seiner starken Wachshülle in der Lage, durch bakterizide Substanzen der Phagozyten verursachte Radikalreaktionen zu unterdrücken. Ammonium alkalisiert die Umgebung und blockiert die Aktivität lysosomaler Enzyme, während Sulfolipide membranotrope kationische Proteine neutralisieren. Darüber hinaus produzieren Tuberkulose-Mykobakterien hochaktive Enzyme mit Katalase- und Peroxidaseaktivität, die mit den Peroxidasesystemen der Makrophagen konkurrieren und gleichzeitig lysosome Hydroperoxide inaktivieren. All dies erhöht die Resistenz der Mykobakterien gegen oxidativen Stress.
Eine weitere Anpassung der Mykobakterien besteht darin, eisenhaltige Verbindungen von Makrophagen für ihre Enzymsysteme zu nutzen und die immunspezifischen Funktionen der Makrophagen zu blockieren. Makrophagen sind einer der Hauptspeicher für Eisen, dessen Überschuss sich in Form von Ferritin anreichert. Der Eisengehalt in Alveolarmakrophagen ist 100-mal höher als in Blutmonozyten, was sicherlich zu ihrer Besiedlung durch Tuberkulose-Mykobakterien beiträgt.
Mykobakterien üben durch Endotoxine und unspezifische Faktoren toxische Wirkungen auf Makrophagen aus. Beide beeinflussen vor allem das Atmungssystem der Makrophagen – die Mitochondrien. Zu den Endotoxinen gehören mykolische Arabinolipide, die die mitochondriale Atmung hemmen. Zu den unspezifischen Toxinen zählen Syntheseprodukte des Lipidanteils der mykobakteriellen Zelle – Phthien und Phthionsäuren –, die eine Entkopplung der oxidativen Phosphorylierung bewirken. Erhöhte Stoffwechselprozesse gehen unter diesen Bedingungen nicht mit einer ordnungsgemäßen ATP-Synthese einher. Die Wirtszellen geraten unter Energiemangel, was zur Hemmung ihrer Vitalaktivität und in der Folge zu Zytolyse und Apoptose führt.
Es ist möglich, dass einige Pathogenitätsfaktoren nur in infizierten Zellen gebildet werden, wie dies bei anderen Bakterien der Fall ist, die eine intrazelluläre Lebensweise bevorzugen. Beispielsweise exprimieren Salmonellen, die in Makrophagen parasitieren, zusätzlich mehr als 30 Gene. Trotz der vollständigen Beschreibung des Genoms des Tuberkulose-Mykobakteriums beziehen sich 30 % der Codons auf Proteine mit unbekannten Eigenschaften.
Arzneimittelresistenz von Mykobakterien
Aus klinischer Sicht ist die Arzneimittelempfindlichkeit eines Mikroorganismus ausschlaggebend dafür, ob eine Standardchemotherapie mit dem indizierten Medikament zur Behandlung der durch den isolierten Stamm verursachten Krankheit eingesetzt werden kann. Resistenzen „sagen ein Therapieversagen mit dem getesteten Medikament voraus“. Anders ausgedrückt: Die Anwendung einer Standardchemotherapie, die zu einer systemischen Wirkstoffkonzentration führt, die unter normalen Bedingungen üblicherweise wirksam ist, unterdrückt die Proliferation „resistenter Mikroorganismen“ nicht.
In der Mikrobiologie basiert die Definition von Arzneimittelempfindlichkeit bzw. Arzneimittelresistenz auf dem Populationsansatz, der unterschiedliche Resistenzgrade eines Pools (heterogener Satz) mikrobieller Zellen impliziert. Arzneimittelresistenz wird anhand quantitativer Merkmale wie der minimalen Hemmkonzentration (MHK) bewertet. Beispielsweise sterben bei einer MHK von 90 90 % der Mikroorganismen ab (bakteriostatische Konzentration). Resistenz sollte daher als ihr Grad in einem Teil der mikrobiellen Population verstanden werden, der in den meisten Fällen das Versagen einer Behandlung vorbestimmt. Es ist allgemein anerkannt, dass 10 % resistenter Stämme in der gesamten mikrobiellen Population eines Patienten pathogen wirken können. In der Phthisiobakteriologie beträgt dieser Wert bei First-Line-Antituberkulosemedikamenten 1 % (oder 20 koloniebildende Einheiten – KBE). Ein solcher Teil der mikrobiellen Population kann die ursprüngliche Population innerhalb eines Monats verdrängen und eine Läsion bilden. Bei Tuberkulosemedikamenten der zweiten Wahl ist das Kriterium für eine Resistenz eine Zunahme der mikrobiellen Population um 10 %.
Die Entwicklung von Arzneimittelresistenzen bei Mikroorganismen ist mit der Selektion in Gegenwart eines Antibiotikums und dem bevorzugten Überleben eines Teils der mikrobiellen Population verbunden, der über Schutzmechanismen gegen das antibakterielle Mittel verfügt. Jede Population enthält eine kleine Anzahl mutierter Zellen (üblicherweise 10 6 -10 9 ), die gegen ein bestimmtes Medikament resistent sind. Während einer Chemotherapie sterben empfindliche mikrobielle Zellen ab, und resistente vermehren sich. Infolgedessen werden empfindliche Zellen durch resistente ersetzt.
Mykobakterien verfügen zunächst über eine hohe natürliche Resistenz gegen viele Breitband-Antibiotika, doch die Spektren und Grade dieser Empfindlichkeit sind bei verschiedenen Arten unterschiedlich.
Unter echter natürlicher Resistenz versteht man eine dauerhafte artspezifische Eigenschaft von Mikroorganismen, die mit dem Fehlen eines Angriffsziels für die Wirkung eines Antibiotikums oder der Unerreichbarkeit des Ziels aufgrund der anfänglich geringen Durchlässigkeit der Zellwand, der enzymatischen Inaktivierung der Substanz oder anderer Mechanismen verbunden ist.
Erworbene Resistenz ist die Fähigkeit einzelner Stämme, bei Antibiotikakonzentrationen, die das Wachstum des Großteils der mikrobiellen Population hemmen, lebensfähig zu bleiben. Der Erwerb von Resistenzen ist in allen Fällen genetisch bedingt: durch das Auftreten neuer genetischer Informationen oder eine Veränderung des Expressionsniveaus der eigenen Gene.
Derzeit sind verschiedene molekulare Resistenzmechanismen von Mycobacterium tuberculosis entdeckt worden:
- Antibiotika-Inaktivierung (Enzyminaktivierung), beispielsweise durch β-Lactamasen;
- Modifikation des Wirkziels (Änderung der räumlichen Konfiguration des Proteins durch Mutation der entsprechenden Genomregion):
- Überproduktion des Ziels, was zu einer Veränderung des Wirkstoff-Ziel-Verhältnisses und zur Freisetzung eines Teils der lebenserhaltenden Proteine der Bakterien führt;
- aktive Entfernung des Arzneimittels aus der mikrobiellen Zelle (Efflux) aufgrund der Aktivierung von Stressabwehrmechanismen:
- Veränderungen der Permeabilitätsparameter der äußeren Strukturen der mikrobiellen Zelle, wodurch die Fähigkeit des Antibiotikums blockiert wird, in die Zelle einzudringen;
- Einbau eines „metabolischen Shunts“ (Umgehung des Stoffwechselwegs).
Neben der direkten Auswirkung auf den Stoffwechsel mikrobieller Zellen führen viele antibakterielle Medikamente (Benzylpenicillin, Streptomycin, Rifampicin) und andere ungünstige Faktoren (Biozide für das Immunsystem) zur Entstehung veränderter Formen von Mykobakterien (Protoplasten, L-Formen) und versetzen die Zellen auch in einen Ruhezustand: Die Intensität des Zellstoffwechsels nimmt ab und das Bakterium wird unempfindlich gegenüber der Wirkung des Antibiotikums.
Alle Mechanismen bilden unterschiedliche Resistenzgrade und ermöglichen Resistenzen gegen unterschiedliche Konzentrationen von Chemotherapeutika. Daher geht die Entstehung von Resistenzen bei Bakterien nicht immer mit einer Abnahme der klinischen Wirksamkeit des Antibiotikums einher. Um die Wirksamkeit und Prognose der Behandlung beurteilen zu können, ist es wichtig, den Grad der Resistenz zu kennen.
Derzeit ist für jedes Erstlinienmedikament gegen Tuberkulose und für die meisten Reservemedikamente mindestens ein Gen identifiziert. Spezifische Mutationen führen zur Entwicklung resistenter Varianten von Mykobakterien. Bei der weit verbreiteten Arzneimittelresistenz bei Mykobakterien ist eine hohe Mutationsrate in vivo wichtig, die höher ist als in vitro.
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Arten der Arzneimittelresistenz von Mykobakterien
Man unterscheidet zwischen primärer und erworbener Arzneimittelresistenz. Zu den Mikroorganismen mit primärer Resistenz zählen Stämme, die von Patienten isoliert wurden, die keine spezifische Therapie erhalten haben oder seit einem Monat oder weniger Medikamente einnehmen. Wenn die Tatsache der Anwendung von Tuberkulosemedikamenten nicht geklärt werden kann, spricht man von „initialer Resistenz“.
Primäre Arzneimittelresistenzen sind von großer klinischer und epidemiologischer Bedeutung. Daher ist es für eine korrekte Beurteilung erforderlich, einem neu diagnostizierten Tuberkulosepatienten vor der mikrobiologischen Untersuchung des diagnostischen Materials keine Chemotherapie zu verabreichen. Die Häufigkeit primärer Arzneimittelresistenzen berechnet sich aus dem Verhältnis der Anzahl neu diagnostizierter Patienten mit primärer Resistenz zur Anzahl aller neu diagnostizierten Patienten, die im Laufe des Jahres auf Arzneimittelempfindlichkeit getestet wurden. Wird während einer einmonatigen oder längeren Tuberkulosetherapie ein resistenter Stamm von einem Patienten isoliert, gilt die Resistenz als erworben. Die Häufigkeit primärer Arzneimittelresistenzen charakterisiert den epidemiologischen Zustand der Tuberkulose-Erregerpopulation.
Erworbene Arzneimittelresistenzen bei neu diagnostizierten Patienten sind das Ergebnis einer erfolglosen Behandlung (falsche Arzneimittelauswahl, Nichteinhaltung des Behandlungsplans, Reduzierung der Arzneimitteldosierung, inkonsistente Versorgung und schlechte Arzneimittelqualität). Diese Faktoren führen zu einer Verringerung der systemischen Arzneimittelkonzentration im Blut und ihrer Wirksamkeit und lösen gleichzeitig Abwehrmechanismen in mykobakteriellen Zellen aus.
Für epidemiologische Zwecke wird die Häufigkeit zuvor behandelter Fälle berechnet. Dabei werden Patienten berücksichtigt, die nach einer erfolglosen Chemotherapie oder einem Rückfall zur erneuten Behandlung angemeldet wurden. Berechnet wird das Verhältnis der Anzahl resistenter Mycobacterium-tuberculosis-Kulturen zur Anzahl aller Stämme, die im Laufe des Jahres bei Patienten dieser Gruppe zum Zeitpunkt ihrer Registrierung auf Arzneimittelresistenz getestet wurden.
In der Struktur der Arzneimittelresistenz von Mycobacterium tuberculosis werden unterschieden:
Monoresistenz - Resistenz gegen eines der Tuberkulosemedikamente, Empfindlichkeit gegenüber anderen Medikamenten bleibt erhalten. Bei der Anwendung einer komplexen Therapie wird eine Monoresistenz recht selten und in der Regel gegen Streptomycin festgestellt (in 10-15% der Fälle bei neu diagnostizierten Patienten).
Polyresistenz ist eine Resistenz gegen zwei oder mehr Medikamente.
Multiple Arzneimittelresistenz ist eine gleichzeitige Resistenz gegen Isoniazid und Rifampicin (unabhängig vom Vorhandensein von Resistenzen gegen andere Arzneimittel). Sie geht in der Regel mit einer Resistenz gegen Streptomycin usw. einher. Derzeit ist die multiple Resistenz von Tuberkulose-Erregern zu einem epidemiologisch gefährlichen Phänomen geworden. Berechnungen zeigen, dass der Nachweis von Erregern mit multipler Resistenz in mehr als 6,6 % der Fälle (bei neu diagnostizierten Patienten) eine Strategieänderung des Nationalen Anti-Tuberkulose-Programms erfordert. Laut Daten zur Überwachung der Arzneimittelresistenz liegt die Häufigkeit multipler Resistenzen bei neu diagnostizierten Patienten zwischen 4 und 15 %, bei Rückfällen bei 45–55 % und bei erfolgloser Behandlung bei bis zu 80 %.
Superresistenz ist eine multiple Arzneimittelresistenz, kombiniert mit einer Resistenz gegen Fluorchinolone und eines der injizierbaren Medikamente (Kanamycin, Amikacin, Capreomycin). Tuberkulose durch Stämme mit Superresistenz stellt eine direkte Bedrohung für das Leben der Patienten dar, da andere Zweitlinienmedikamente gegen Tuberkulose keine ausgeprägte antibakterielle Wirkung haben. Seit 2006 wird in einigen Ländern die Verbreitung von Mykobakterienstämmen mit Superresistenz überwacht. Im Ausland wird diese MDR-Variante üblicherweise als XDR bezeichnet.
Kreuzresistenz liegt vor, wenn Resistenzen gegen ein Medikament zu Resistenzen gegen andere Medikamente führen. Bei M. tuberculosis sind resistenzassoziierte Mutationen in der Regel nicht miteinander verknüpft. Die Entwicklung von Kreuzresistenzen ist auf die Ähnlichkeit der chemischen Struktur einiger Tuberkulosemedikamente zurückzuführen. Kreuzresistenzen treten besonders häufig innerhalb einer Medikamentengruppe auf, beispielsweise bei Aminoglykosiden. Zur Vorhersage von Kreuzresistenzen sind genetische Untersuchungen mykobakterieller Kulturen in Kombination mit mikrobiologischen Resistenzstudien erforderlich.
Nichttuberkulöse Mykobakterien
Nichttuberkulöse Mykobakterien werden äußerst selten von Mensch zu Mensch übertragen. Die Häufigkeit der Isolierung einiger ihrer Arten aus Patientenmaterial ist vergleichbar mit der Häufigkeit der Isolierung dieser Arten aus Umweltobjekten. Infektionsquellen können Nutztiere und Vögel sowie unverarbeitete Produkte sein. Mykobakterien kommen in Schlachtmaterial und Rindermilch vor.
Laut bakteriologischen Laboren lag die Prävalenz nichttuberkulöser Mykobakterien in den Jahren 2004–2005 bei 0,5–6,2 % aller Mykobakterien bei neu diagnostizierten Patienten. Die Häufigkeit dürfte etwas höher sein, da die verwendete Methode zur Aufbereitung des diagnostischen Materials für nichttuberkulöse Mykobakterien nicht optimal ist. Saprophytische Mykobakterien können im diagnostischen Material vorhanden sein, wenn die Sammelregeln nicht eingehalten werden oder aufgrund der Eigenschaften des Materials (beispielsweise kann M. smegmatis aus dem Urin männlicher Patienten isoliert werden).
In diesem Zusammenhang ist es wichtig, den nachgewiesenen Mykobakterientyp anhand des Patientenmaterials wiederholt zu bestätigen.
Mykobakterien befallen die Haut und Weichteile und können auch eine Mykobakteriose der Lunge verursachen, die besonders häufig bei Immunschwäche auftritt. Bei pulmonaler Lokalisation wird sie häufiger bei älteren Männern mit chronischen Lungenerkrankungen, einschließlich Pilzinfektionen, in der Vorgeschichte festgestellt.
Von allen Mykobakterien ist der M. avium-intracellularae-Komplex der häufigste Erreger der pulmonalen Mykobakteriose beim Menschen. Er verursacht Erkrankungen der Lunge, der peripheren Lymphknoten und disseminierter Prozesse. Im Norden Europas sind etwa 60 % der pulmonalen Mykobakteriosen betroffen. Fibrokavernöse und infiltrative Prozesse überwiegen und nehmen aufgrund der hohen Resistenz gegen Tuberkulosemedikamente einen chronischen Verlauf.
M. kansasii sind die Erreger chronischer, tuberkuloseähnlicher Lungenerkrankungen. Chemotherapie ist aufgrund der höheren Empfindlichkeit von M. kansasii gegenüber antibakteriellen Medikamenten wirksamer. M. xenopi und M. malmoense verursachen hauptsächlich chronische Lungenerkrankungen. Sie können Warm- und Kaltwasserversorgungssysteme kontaminieren. Der Lebensraum von M. malmoens ist nicht vollständig geklärt. M. xenopi zeigt eine relativ gute Empfindlichkeit gegenüber einer Tuberkulosetherapie. M. malmoense zeigt in vitro eine relativ hohe Empfindlichkeit gegenüber Antibiotika, aber eine konservative Behandlung ist oft wirkungslos und sogar tödlich. M. fortuitum und M. chelonae gelten als Erreger von Knochen- und Weichteilerkrankungen aufgrund der direkten Kontamination von Wunden bei Traumata, Operationen und penetrierenden Verletzungen. Sie verursachen bis zu 10 % der pulmonalen Mykobakteriosen. Es tritt als chronische, destruktive bilaterale Läsion auf, die oft tödlich verläuft. Medikamente gegen Tuberkulose und Breitbandantibiotika wirken gegen diese Arten von Mykobakterien nicht oder nur wenig.
In den südlichen Regionen sind Mykobakteriosen der Haut und Weichteile, verursacht durch M. leprae und M. ulceranse, weit verbreitet. Die Identifizierung nichttuberkulöser Mykobakterien erfolgt in den Laboren der führenden Tuberkulose-Institutionen des Landes. Dies erfordert hohe Qualifikationen und eine gute Ausstattung der Labore.